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Rôle de la chromatine dans la réparation de l'ADN
- Thématique(s)
- Epigénétique
- Unité de rattachement
- UMR9019 - Intégrité du Génome et Cancers
- Responsable(s)
- Beatrice Rondinelli
- Rattachement institutionnel
-
Gustave Roussy, CNRS, Université Paris-Saclay
Résumé
Dans les cellules, l’ADN s’enroule autour de protéines appelées histones pour former un complexe nucléoprotéique appelé chromatine. Du fait de son organisation et sa structure, la chromatine contribue à la réponse aux dommages de l’ADN (DDR), dont l’objectif est de préserver l’intégrité du génome contre les mutations et autres aberrations chromosomiques, en facilitant la réparation des dommages causés à l’ADN par des sources endogènes ou exogènes telles que les rayonnements, les substances chimiques et les sous-produits du métabolisme. Ce rôle est essentiel pour préserver le fonctionnement cellulaire et prévenir les pathologies caractérisées par une instabilité génomique, comme le cancer.L’équipe étudie le rôle de la chromatine dans la réponse aux dommages de l’ADN au sein des cellules humaines, afin de mieux comprendre un processus biologique dont de nombreux mécanismes restent encore à caractériser.
Objectifs
Comprendre comment les facteurs liés à la chromatine participent à la réponse aux lésions de l’ADN et préservent l’intégrité du génome dans les cellules humaines, et comment leurs altérations — telles que les mutations ou les dérèglements d’expression — détournent cette réponse et induisent une instabilité génomique dans le cadre de maladies, en particulier le cancer.
Nous cherchons à répondre à des questions générales : comment les facteurs liés à la chromatine contribuent-ils à la réponse aux lésions de l’ADN, et comment leur dysfonctionnement pathologique compromet-il l’intégrité du génome dans les cellules cancéreuses ?
Malgré les connaissances importantes acquises au cours des dernières décennies, nous ne disposons toujours pas d’une compréhension globale de la manière dont la chromatine induit les changements protéomiques, métaboliques et liés aux modifications post-traductionnelles au niveau des lésions de l’ADN détectées lors de la synthèse de l’ADN, ni de la manière dont ceux-ci régulent la détection des dommages, l’activation des voies de réparation et la duplication fidèle de l’(épi)génome. Nous devons également analyser comment l’organisation aberrante de la chromatine dans les cellules cancéreuses compromet l’intégrité du génome tout en maintenant la prolifération — des vulnérabilités qui pourraient être ciblées pour favoriser la destruction des cellules cancéreuses.
Approches
Nous nous intéressons aux lésions de l’ADN induites par le stress de réplication — toute source, endogène ou exogène, qui interfère avec la progression de la fourche de réplication et la duplication fidèle de l’épigénome. Nous étudions la fonction de la chromatine en analysant comment les modifications protéomiques, métaboliques et les modifications post-traductionnelles survenant lors d’une lésion de l’ADN influencent l’activation des voies de réparation, la duplication du génome et la restauration de l’épigénome après la synthèse (figure 1). Pour atteindre cet objectif, nous mettons en place et exploitons l’édition génomique de lignées cellulaires humaines, des criblages CRISPR, l’imagerie à haut débit, des prédictions in silico des interactions structure-protéine et des approches protéomiques adaptées aux facteurs de la chromatine (figure 2).
Membres de l'équipe
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RONDINELLI Beatrice - Responsable équipe
Chargé de recherche et assimilés, CNRS
DE CLERICO Alessandra
Doctorant, Université Paris-Saclay
KREMP Marco
Post-doctorant, Gustave Roussy
NERVANA Issa
Post-doctorant, CNRS
URIBE-CALVILLO Tannia
Ingénieur d'études ou assimilé, CNRS
Publications clés
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Aberrant DNA repair reveals a vulnerability in histone H3.3-mutant brain tumors, Nucleic Acids Research, 2024.
Giacomini G., Piquet S., Chevallier O., Dabin J., Bai S.-K., Kim B., Siddaway R., Raught B., Coyaud E., Shan C.-M., Reid R.J.D., Toda T., Rothstein R., Wilhelm T., Barra V., Crane A., Dubois F., Bandopadhayay P., Beroukhim R., Naim V., Jia S., Hawkins C., Rondinelli B.§, and Polo S. E.§
-
Histone variants: guardians of genome integrity, Cells, 2020 Nov 5; 9(11):2424.
Ferrand J.*, Rondinelli B.*, Polo S.
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EZH2 promotes degradation of stalled replication forks by recruiting MUS81 through histone H3 trimethylation, Nature Cell Biology, 2017 Nov; 19(11):1371-1378.
Rondinelli B., Gogola E., Yücel H., Duarte A.A., van de Ven M., van der Sluijs R., Konstantinopoulos P.A., Jonkers J., Ceccaldi R., Rottenberg S., D’Andrea A.D.
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FANCD2 maintains fork stability in BRCA1/2-deficient tumors allowing for alternative end-joining DNA repair. Cell Reports, 2016 Jun 14 ; 15(11):2488-99.
Kais Z.*, Rondinelli B.*, Holmes A., O'Leary C., Kozono D., D'Andrea A.D.§ and Ceccaldi R§.
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Histone demethylase JARID1C inactivation triggers genomic instability in sporadic renal cancer. Journal of Clinical Investigations, 2015 Dec; 125(12):4625-37.
Rondinelli B., Rosano D., Antonini E., Frenquelli M., Montanini L., Huang D., Segalla S., Yoshihara K., Amin S.B., Lazarevic D., Verhaak R.G., Futreal P.A., Di Croce L., Chin L., Cittaro D., Tonon G.
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